1、 检验一些不易溶解的样品时，采用超声波超声可使样品溶解更快速更彻底，主成分溶解完全，没有浪费，对含量均匀度测定没有影响，简单方便且更合理。
2、乙醇作为溶剂溶解主成分时，不能溶解辅料，需要过滤。采用离心方法使辅料沉淀，取上清夜。（注意，有很多离心管不具塞子，可用柔软的塑料薄膜袋扎橡皮筋做塞子。没有塞子离心，偏差可达5％），与薄膜过滤法比较，对测定结果没有影响。而且，如果过滤法操作不够快速，乙醇挥发，易影响测定结果。
3、在做浸出物的检测时，一定要按标准控制好溶剂的浓度（如乙醇等），否则检验结果会差异很大。
4、当液相鉴别中供试品与对照品出峰时间不一致，无法判断是否合格时，可用对照品与供试品各半配成混合溶液后进样，若峰宽未变宽，未出现驼峰，即可判断为合格。
5、做原料残留物检测的时候，如果主成分对杂质有干扰，现有方法无法检出，需要自己建方法的话，要优先考虑利用理化性质将杂质分离出来再进行测定。往往有意想不到的效果。
6、用薄层色谱法鉴别时应该考虑展开剂的温度与配制顺序，有时会影响色谱的结果。
7、薄层色谱鉴别时饱和时间一定要够。做有机溶剂残留量检查时,可以不拘泥于规定的色谱柱, 通常的DB-624可以满足要求, 取样量也可以灵活调整, 标准溶液浓度根据限度做相应调整就可以了。
8、在采用HPLC法测物质含量时，如若流动相中用了缓冲盐，一定要注意其pH值，放置过程中可能会产生变化，而某些检测成分对这种变化很敏感。
10、用HPLC法测物质含量时，温度的控制极其重要，最好用有柱温箱的，如果没有就要装空调保持恒温后再测定，否则会出现基线飘移，结果不准确。
11、在使用微量移液枪时,要注意"重压轻打",加液会更准确。
12、提取分液时如两相的分界不清，可加少量的饱和氯化钠。分层处会比较明显。另外，用电吹风对分液漏斗加温或用热抹布敷，可以加速其分层。
13、呋喃唑酮溶解很慢，溶解时间一定要长一点。
14、用HPLC法测物质含量时，样品最好用流动相溶解，否则容易产生干扰峰，影响结果，特别有可能出现倒峰，一定要注意。
15、使用含有缓冲盐的流动相，容易堵塞管路和柱子，甚至检测器，如果检测器堵了，最好先不要拆，使用10%甲醇水超声加热一下作为流动相，慢慢小流量冲洗。效果很明显。
16、非水滴定中，试剂的含水量对结果有较大影响，如更换不同品牌的试剂，试验结果会出现不同结果。
17、比较稠或量少的溶液需要用滤纸过滤时，可以先通过离心的方法使之分层，再去过滤。这样可以加快过滤，减少有机溶剂的挥发（环境温度高时）。
18、用高效液相色谱仪检测人参、麻黄的含量时因检测波长为边缘波长（203、207nm）往往一次不能成功，特别是使用一段时间后的检测器。可卸掉色谱柱，直接连接检测器，用0.1%的盐酸清洗检测池4小时，效果会好些。
19、用高效液相色谱仪测定含量时，用色谱纯试剂处理对照品和样品，可减少误差。
20、HPLC检测中，梯度条件容易产生干扰峰，可尝试通过以下几种方法规避：
1）：使用重蒸后的水或用市售的纯净水（屈臣氏的比较好）
2）：尽量选用高波长下检测
3）：梯度程序尽量平缓
4）：样品浓度选用线性范围内的最高点
21、在作澄明度检查、可见异物或者不溶性微粒检查时，不可以用超声波助溶，否则有些东西就被分解了，什么也检测不到了。
22、在做溶出度实验时，规定药液需经0.8μm的滤膜滤过，但采用液相检测时，进柱前样品还要经0.45μm的滤膜，此时，可以省略第一步过滤，直接做进柱前的样品过滤，否则滤膜会对样品产生吸附，使检测结果偏低。另外不同生产厂家的滤膜对样品的吸附不同，在检测时一定要要注意，可用对照品先做一个过滤前后的对比试验，检查滤膜的吸附。
23、在做有机溶剂残留市要注意载气流速一般柱流速在1—3mL较好，太大样品重复性不好，尾吹气流量也需注意。
24、在检验纯化水硝酸盐项目时一定要冰浴，加硫酸的速度也要控制不能快（快了会使对照和样品的颜色都很深）也不能太慢（不能让试液冷却），要趁热拿去水浴加热。
25、使用HPLC的过滤装置时 ，一定要注意虑膜的材质，如果是“羟甲基纤维素”不可以过滤含有机相的液体，否则就溶解了，有机相过滤要使用聚四氟乙烯的。
26、在做不溶性微粒的时候是可以进行超声的，可以进行30秒的超声。特别是象冻干粉针这样的品种，进行超声或者放置可以使不溶性微粒的数值减小，大家可以实验一下，放置后数据明显降低。
27、高效液相色谱梯度洗脱时，使用梯度条件情况下，在做第一针样品前，最好走一个空梯度，这样保留时间会一致些。
28、分析盐酸金刚烷胺片含量时，加溶剂后最好在５０℃的水浴中加热溶解，因为金刚烷胺溶解度受温度影响。
29、在做实验前，要对你做的实验的安全性，实验中可能会出现的问题，做到心中有数特别是对具有危险性的实验，更要做好一切准备，像防火，防爆炸等。化学实验毕竟是有危险的，要时时注意特别要规范操作 在没有弄明白之前，最好不要轻易动手。
30、一个同事用烧瓶提取样品时加了塞，并特意未将塞子盖紧，以为可以放气，结果由于无法放气导致爆沸，里面的药液全部冲到天花板上，还好旁边没人哦。所以做实验室且不可大意，还是小心谨慎为好。
31、用薄层层析法时，很多样品因为含有羧基或者氨基会造成跑板拖尾现象或者重叠，这将难以和标准品比对。建议大家在含羧基的样品中可在展开剂里面加少量羧酸，含氨基的样品可以在展开剂里面加少量三乙胺。
32、做油性基质提取时,由于受温度影响严重,常出现乳化现象,分层时间长,可上离心机只要几分钟。
33、有人误将浓硝酸（在空气中有“发烟”现象）作为“发烟硝酸”使用，进行硝化－氢氧化钾呈色鉴别反应，结果不能得到正确的颜色反应，造成假阴性结果。该呈色反应的机理为利用样品的水解产物莨菪酸，经发烟硝酸加热硝化为三硝基衍生物，在氢氧化钾的醇溶液中形成醌型化合物而呈色。“发烟硝酸”是指含HNO3达86－97.5%以上的浓硝酸。而“浓硝酸”虽有"发烟"现象，但其HNO3仅为69%－71%，用于上述呈色反应，会因为硝酸浓度不足而使反应不完全，形成假阴性结果。
34、一般的盐溶解，可采用超声波加快溶解速度。尤其对一些需要加热再冷却的样品!
35、做薄层鉴别方法研究时，有时候对照品斑点与样品相应斑点位置不一致，可以在样品点上加点对照品，注意点圆心要重合等，在相同方法展开，如果在相应位置上没有出现两个斑点，则认为是同样的物质斑点。
36、在用HPLC做定量检测时，柱温和流动相的比例要尽量保持一致，否则保留时间和积分面积会发生变化，影响最终的检测结果。
37、超声溶解难溶盐类，可加快溶解速度。特别对一些不适合加热的样品。
38、看到美国药典的对照品干燥通常规定具体时间3到5小时，我们也应该采用这种方法而不是干燥到恒重。
39、做薄层分析时，最好将薄层板两边的硅胶层切掉2mm，这样，在展开时可以消除边缘效应，使展开效果更好。
40、在做HPLC时，假如发生重叠峰的现象，通常可以尝试以下几种方法：
1）、改变流动相成分，如乙腈相改为甲醇相；
2）、调整流动相比例；
3）、调整流动相pH值；
4）、梯度洗脱。
41、做含量测定时，若对照品规定干燥时，一定要照规定方法干燥，否则测出的含量会差别很大，若没规定干燥时，参照2005年版凡例应用五氧化二磷干燥，否则测出的含量也会差别很大，别认为是刚买的就忽视这一点，随便试几个对照品就知道了，结果差很多的。
42、高浓度的NaOH标准溶液(比如0.5M)在使用过程中,桶底的部分往往会浓度变高,一般十升的溶液,最下面的一升就不能用了,否则会给滴定结果带来很大的偏差,尤其是夏天。
43、标定标准溶液时，最好使用两个厂家的基准试剂同时标定三个样。
44、当液相鉴别中样品与对照品出峰时间不一致，无法判断是否合格时，可用对照品与样品各半配成混合溶液后进样，若峰宽未变宽，未出现驼峰，即可判断为合格。
45、用HPLC法测定酚酸等不稳定成分时，可将对照品溶液及供试品溶液调成酸性(可用磷酸等)，这样即不会影响测定结果，而且样品也比较稳定，保存时间比较长，pH值一般调到2左右即可!
46、在进行HPLC测定时，所用的水最好是双蒸水，这样对测定结果干扰少，而且要勤换，如果通道生霉，可用异丙醇冲洗通道。有机相如已腈最好滤一下，即使是进口色谱纯溶剂。
47、做微生物检测时，我曾经遇到过一件事，发现移液管中有干热灭菌法杀灭不了的细菌，我们对微生物检查的各个环节做了对照，才发现的，后来就改用一次性注射器了，虽然浪费了点，但是这种现象再也没有发生过。
48、做红霉素片释放度时，酸度对释放度的影响不小，能差5～7个百分点，要及时更换硫酸，否则可能会影响释放度结果。
49、曾经做过一次微生物检查的验证，细菌一般培养48小时，霉菌72小时，其实在细菌20个小时，霉菌40个小时左右的结果和最终的结果很相近的，如果不是在边缘，完全可以在很着急的情况下下结论。
50、采用薄层法进行检测时，可在展开前在展开室四周用略低于展开室高度的滤纸贴在内壁，使展开剂充分预饱和，这样可取得较好的展开效果。
51、做格列吡嗪片含量时对照品不容易溶解，可在溶剂里面少加一点0.1mol的氢氧化钠溶液使对照品溶解后再定溶。
52、高效液相色谱柱的维护：
1）使用预柱保护分析柱（硅胶在极性流动相/离子性流动相中有一定的溶解度）；
2）大多数反相色谱柱的pH稳定范围是2－7.5，尽量不超过该色谱柱的pH范围；
3）避免流动相组成及极性的剧烈变化；
4）流动相使用前必须经脱气和过滤处理；
5）如果使用极性或离子性的缓冲溶液作流动相，应在实验完毕柱子冲洗干净，并保存于甲醇或乙腈中；
6）氯化物的溶剂对其有一定的腐蚀性，故使用时要注意，柱及连接管内不能长时间存留此类溶剂，以避免腐蚀。
53、献丑一下吧。
1）萃取过程产生的乳化，在乳化不是太严重情况下将分液漏斗水平放置桌上。比用热布包裹的效果好和快。
2）上面已经有人提过，这里重复一下。只有药品性质稳定，可以将振摇工作交给超声仪器超声。即舒服、测定效果又好。如果药品性质不是很稳定，可以将其放在恒温振荡仪中。不设温度就好了，加上浴盖又避光、摇得又均匀。
3）清洗移液管等细长玻璃器具，冲洗要反其道进行。将尖头对着水柱清洗，省力很多。
54、萃取过程产生的乳化，在乳化不是太严重情况下将分液漏斗水平放置在水浴锅的孔上，用水蒸汽加热也是有效果的。
55、做红氧化铁含量测定时一定要用盐酸煮沸几分钟，不能因为危险而随便在水浴上加热，这样会使含测结果超过100%。
56、作萃取时如产生乳化，可加入相应的盐类。
57、在做分析方法验证时，鉴别项的专属性一般都很强，像红外、紫外等，可不做专属性，但是注意显色反应的空白溶液，要保证溶液本身不显色。
58、用HPLC法测物质含量时，更换流动相时应先用10%的甲醇过渡10分钟，这样可避免在两种流动相相溶时产生小气泡。
59、如果做过三硅三酸镁的检测，是否会遇到这样一个问题：重金属检测时按照标准进行到最后，得到的样品呈现红色，与对照品的颜色(黄棕色)无法进行对照。其主要原是因为在此标准中加入酚酞调节溶液的酸碱度，最后一步加入硫代已酰胺试液后，溶液显碱性，使酚酞显红色。解决的方法是在最后加入盐酸进稍微多加一点，使溶液显酸性，最终使对照与样品颜色一致。
60、用GC测有机残留水不溶性成分时，如苯、二氯甲烷等，称取毫克级标样时，在量瓶底部预先加少量DMF/DMSO，会减少天平的跳动，帮助准确称量。
61、按2005版药典含量称样量必须严格控制在0.1g或以下，若称样量高氧化不完全会影响结果，使结果偏低。
62、在做比色法测定环氧乙烷残留时。若加入品红后等待1h后不见比色管（实验中加入已二醇体积>0.8ml的比色管）呈微红色，则证明实验中所使用的高碘酸失效，需重新配置高碘酸。
63、在做HPLC实验中，如果经常做同一品种，流动相固定的情况下（不含有缓冲盐），在做完试验后可以用流动相直接冲柱子，不用甲醇或纯化水冲，直接可以明日继续使用。
64、在含量测定过程中，如果遇到测量结果不准时如何处理？根据我的经验在测量过程中可以带标准样品（已知含量）和被测试样品同时、平行进行测试。把测试结果和标准样品进行比较即可。这样的话，我们测试的结果就可以得到修正了。如已知含量的标准样浓度为1.0，而我们测试结果为0.91，我们就需要把样品的测试结果除以0.91即可得到相对准确的结果。采用“加标回收”的方法更好。只是相对复杂一些。
65、HPLC测含量时流动相若是乙腈，乙腈最好是新打开的，使用放置时间过长的乙腈容易导致检测不出主峰。
66、在做培养基的灵敏度实验的时候，同时做试验菌几个稀释级的试管，并同时取菌液计数．培养结束后，取菌液计数在小于100的培养结果做为测试结果，可以一次性将培养基的灵敏度测试出来，免除了当菌液计数结果不在要求范围时培养基的灵敏度测试结果作废，同时减少了实验误差。
67、生孢梭菌计数采用流体硫乙醇酸盐培养基(含琼脂)，称取培养基15g，再加入纯化琼脂粉0.4~0.5g加入500ml蒸馏水后加热使溶解后分装至30*200的大试管中，50ml/管，加塞，包扎后灭菌，培养基温度保持在45~50摄氏度时，将稀释好的生孢梭菌菌液用吸管吸取1ml加入至培养基中，轻轻摇匀后置30~35摄氏度培养16~20小时，立即观察点计菌数，切记培养期间不可摇动试管，生长的微生物群体在培养基中分散成小米状，注意选择菌数在30~50之间的试管，便于点计。
68、在含量测定中如果使用到含结晶水的无机盐作为对照品时，一定要注意不能按标准规定的”在五氧化二磷减压干燥器中干燥12个小时以上"，那样会失去结晶水，造成结果偏低。此类对照品的保存环境一定要注意，不要引起吸潮现象。
69、在溶解培养基时，如用电炉，要专人负责看管，否则培养基融化后会冲上天花板，并且石棉网会彻底报废的。
70、检测纯化水硝酸盐时要缓缓滴加硫酸且在冰浴中不断摇均使其放热均匀，能使试验结果明显。
71、在用HPLC测定肝苏胶囊的含量时，其盐酸的浓度相当重要，浓度一定要够才行哟。
72、在做HPLC时，最好一次把流动相配足，如果先配的流动相不够，再用相同的方法去配的流动相继续用，会出现保留时间不一致。其次，在发现流动相不够时，最好不要把流出来的"废液"再收集起来继续用，这样出来的峰面积会增大的。
73、采用蒽酮法测核糖含量时，蒽酮要现用现配，棕色瓶装，稀释硫酸应于30-40度时加入蒽酮液中混匀。标准葡萄糖于60度干燥2小时配制。
74、在用HPLC进行分析时，环境的温度，对基线的影响很大，八月份前后，我们的HPLC的基线一直走不稳，究其原因是我们开了空调，室内温度波动比较大，后来我们将HPLC放到一个面积小一点的房间，没有再出现此类情况。
75、对于HPLC做梯度时，如果用到水，那么水的质量对基线的影响很大，水越好，基线越平稳，建议使用屈臣氏水和杭州产娃哈哈水。
76、做HPLC时，方法不要随意变更。前一段时间，我们有一产品，本来用乙腈溶解，峰形不好。一化验员把它改成用流动相溶解，峰形很好，但是样品分解了，主成分只有70%左右，最后才发现，这样品用流动相溶解很不稳定，降解很快，放十几小时后，主成分就没有了。
77、说一下做抗生素的一点体会，有时市售的培养基琼脂量加的不一样，一般是加多了会导致药液到了培养时间不能下完，可以在配制时适当多加一点水。另外培养基的pH值对抑菌圈的影响很大，一定要测一下pH值。
78、做抗生素加药时采用的毛细滴管尖头容易碰断，采用注射器去掉玻璃塞，把后面的手柄部分用锉刀去掉在酒精喷灯上圆口，做一个喇叭口，前面买7号平头针头或者把7 号针头锉平，用着很方便，并且加液比原来更能准确把握。
79、在用天平称样的过程中，如果跳稳定性很差，各方面的因素都排除以后还是不能解决，不妨考虑是否是因为静电的影响。解决办法是把称量盘等在金属上靠一下，导掉静电。
80、做炽灼残渣是要控制好温度，不要让样品燃烧，不然溶液喷溅，数据就不准了。
