出厂检验常见微生物指标检验方法（包括菌落总数、大肠菌群等）！

 

食品检样经过处理，在一定条件下（如培养基、培养温度和培养时间等）培养后，所得每g（ml）检样中形成的微生物菌落总数。

 

菌落总数的测定

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检验标准:

GB 4789.2-2016食品安全国家标准食品微生物学检验菌落总数测定

菌落总数:

食品检样经过处理，在一定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后，所得每g检样中形成的微生物菌落总数。

制备1:10样品匀液

称取25g样品置盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水水的无菌均质杯内8000 rimin- 10000r/min均质1 min-2 min.或放入盛有225 mL稀释液的无菌均质袋中。用拍击式均质器拍打1min~2 min。制成1:10的样品匀液。

制备1:100样品匀液

用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1mL沿管壁慢慢注入盛有9mL稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头不要触及稀释液面) ，振摇试管或换用支无菌吸管反复吹打使其混合均匀。制成1:100的样品匀液。

制备10倍品匀液

按上一步操作程序。制务10倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1次1mL无菌吸管或吸头。

取样并制备平板

选择2个一3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液) ，在进行10倍递增稀释时，吸取1mL样品匀液于无菌平皿内，每个释释度做两个平皿。同时，分别吸取1mL空白稀释液加入两个无菌平皿内空白对照。

及时将15mL-20mL冷却至46℃的平板计数琼脂培养基(可放置于46℃士1℃恒温水浴锅中保温)倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。

2.1 待琼脂凝固后，将平板翻转，36℃士1℃培养48 h+2h。

2.2 如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖薄层琼脂培养基(约4mL)，凝固后翻转平板，按2.1条件进行培养。

3.1 应对平皿上所有肉眼可见的菌落进行计数

3.2 平板上菌落计数可使用自动化菌落计数仪,也可用肉眼观察(必要时可用放大镜观察)记录培养基上菌落数量和相应的稀释倍数。

3.3 选取菌落数在30-300CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。

3.4 如果在一个稀释度的两个平板中,一个平板的菌落数在30-300之间,另一个大于300或小于30时,则以30-30之间平板菌落数作为本稀释度结果记录。

3.5 如所有平板的菌落数均在30CFU以下,则记录平板中具体的菌落数;如果没有菌落生长,则记录为小于1CFU。

3.6  如平板上菌落数大于300CFU,则记录为多不可计;但如果所有稀释度的平板上落数均大于300CFU,则对稀释度最高的平板进行计数、其他稀释度平板记录为多不可计。

3.7 同一稀释度的两个平行平板中,一个平板有较大片状落生长时、应不进行计数，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数。

3.8 如果同一稀释度的两个平行平板均有片状菌落生长,选取片状菌落不到平板一半，而剩余一半落分布均匀的平板,计数一半平板落数并乘以2代表全皿菌落数。

3.9 当平板上出现菌落同无明显界线的状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。

4.1 若只有一个稀释度平板上的菌落数在30-300CFU之间,计算两个平板菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每g(mL)样品中菌落总数结果。

4.2 若所有稀释度的平板菌落数均小于30CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。

4.3 若所有稀释度的平板菌落数均大于300CFU,则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数计算。

4.4 若所有稀释度(包括液体样品原液)平板均无菌落生长,则以小于1乘以最低稀释倍数计算。

4.5 若所有稀释度的平板菌落数均不在30-30CFU之间,其中一部分小于30CFU或大于300CFU时,则以最接近30CFU或300CFU的平均菌落数乘以稀释倍数计算。

4.6 若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时,除30-300FU范围之外的平板,按如下公式计算:

5.1 菌落计数以落形成单位(colony-forming units，CFU)表示,称重取样以CFU/g为单位报告,体积取样以 CFU/ml为单位报告,表面取样以 CFU/cm2为单位报告。

5.2 菌落数小于100CFU时，按”四舍五入”原则修约，以整数报告。

5.3 菌落数大于或等于100CFU时,将第3位数字采用“四舍五入”原则修约后,取前2位数字,后面用0代替位数,也可用10的指数形式来表示,按“四舍五入”原则修约后,采用两位有效数字。

5.4 若所有平板上为蔓延菌落而无法计数,则报告菌落延。

5.5 若空白对照上有菌落生长,则此次检测结果无效。

注：菌落总数结果计算与报告方式实例见表2.1

 

大肠菌群               

 

GB 4789.3-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠菌群计数 MPN法

固体和半固体样品:

·称取25g样品,放入盛有225mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯 内 ,8000r/min~10000r/min均质1min~2min,或放入盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无 菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min~2min,制成1∶10的样品匀液。 

液体样品:

·以无菌吸管吸取25mL样品置盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶 (瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)或其他无菌容器中充分振摇或置于机械振荡器中振摇,充分混匀,制成1∶10的样品匀液。

·用1mL 无菌吸管或微量移液器吸取1∶10样品匀液1mL,沿管壁缓缓注入9mL磷酸盐缓冲 液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支1mL无菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成1∶100的样品匀液。 

·根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释 1次,换用1支1mL无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15min。

每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种3管 月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1mL(如接种量超过1mL,则用双料 LST肉汤),36 ℃± 1 ℃ 培养24h±2h,观察倒管内是否有气泡产生,24h±2h产气者进行复发酵试验(证实试验),如未 产气则继续培养至48h±2h,产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。 

用接种环从产气的 LST 肉汤管中分别取培养物1 环,移种于煌绿乳糖胆盐肉汤(BGLB)管中, 36 ℃±1 ℃培养48h±2h,观察产气情况。产气者,计为大肠菌群阳性管。

按3确证的大肠菌群 BGLB阳性管数,检索 MPN 表(见附录 B),报告每g(mL)样品中大肠菌群的MPN值。 

GB/T 4789.3-2003 食品卫生微生物学检验 大肠菌群测定

·制备1:10样品匀液

以无菌操作将检样25g(mL)放于含有225mI.灭菌生理盐水或其他稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌乳钵内,经充分振摇或研磨做成1 : 10的均匀稀释液。固体检样最好用均质器,以8 000 r/min~10 000 r/min的速度处理1 min,做成1 : 10的均匀稀释液。

·制备1:100样品匀液

用1mL无菌吸管吸取1:10样品匀液1mL,注入盛有9mL灭菌生理盐水或其他稀释液的试管中，振摇试管混合均匀，制成1:100的样品匀液。

·制备10倍品匀液

领取1mL灭菌吸管，按上条操作依次做10倍递增稀释液，每递增稀释一次，换用1支1mL灭菌吸管。

·移取样品

根据食品卫生标准要求或对样品污染情况的估计,选择三个稀释度，每个稀释度接种三。

将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内，接种量在1mL以上者，用双料乳糖胆盐发酵管，lmL及以下者，用单料乳糖胆盐发酵管。每一稀释度接种三管，置36 ℃± 1 ℃培养24 h±2 h,如所有乳糖胆盐发酵管都不产气则可报告为大肠菌群阴性，如有产气者，则按下列程序进行。

将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上，置36 ℃± 1 ℃温箱内，培养18h~ 24h,然后取出，观察菌落形态，并做革兰氏染色和证实试验。

伊红美蓝琼脂:伊红Y和美蓝抑制绝大部分革兰氏阳性菌的生长.伊红Y为酸性染料，美蓝为碱性染料，琼脂是凝固剂。大肠菌群发酵乳糖产酸时，细菌带正电荷，所以染上伊红(红色)，再与美蓝结合形成紫黑色菌落，大部分有金属光泽。

在上述平板上，挑取可疑大肠菌群菌落1- 2个进行革兰氏染色，同时接种乳糖发酵管，置36 ℃± 1 ℃培养24 h±2h,观察产气情况，凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性的无芽孢杆菌，即可报告为大肠菌群阳性。

根据证实为大肠菌群阳性的管数，查MPN检索表，报告每100mL (g)大肠菌群的MPN值。